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【Nature Protocols】类器官培养方法系列(4):从iPSC到远端肺类器官——在体外重现肺发育、纤维化与病毒感染

肺的远端区域承担气体交换,也是多种间质性肺病和呼吸道病毒损伤的关键发生部位。然而,传统2D培养难以同时呈现肺上皮分化、上皮-间充质互作以及分支形态发生。

哥伦比亚大学与西奈山伊坎医学院团队在《Nature Protocols》中系统整理了一套人多能干细胞(hPSC,包括iPSC)定向分化方案:依次经历确定性内胚层、前肠前部内胚层、腹侧化、肺芽类器官和Matrigel三维培养,约40天获得具有分支形态的远端肺类器官,并可维持超过180天。该模型可用于研究人肺发育、间质性肺病以及呼吸道病毒感染。


一、模型亮点


与常见的肺类器官体系相比,这套方案有几个值得关注的特点:

  • 发育路径完整:从hPSC出发,连续模拟确定性内胚层、前肠前部内胚层、肺芽及远端肺组织的形成过程。

  • 自发分支生长:肺芽类器官包埋于Matrigel后发生向外出芽和分支,形态上接近肺的分支形态发生。

  • 上皮与间充质共存:体系中可检测到肺上皮和肺间充质相关细胞,适合研究上皮-间充质互作及纤维化。

  • 无需谱系报告系统:常规流程不依赖NKX2.1等报告细胞系,也不需要中间纯化;但确定性内胚层纯度必须严格质控。

  • 长期培养与多场景应用:类器官可培养超过6个月,用于发育研究、遗传性间质性肺病建模和病毒感染研究。


二、研究设计


该方案遵循胚胎肺发育的信号逻辑,以“分阶段定向诱导 + 悬浮肺芽形成 + 3D基质分支培养”为主线。约在第20-25天选择状态良好的肺芽类器官进行Matrigel包埋,随后持续培养和成熟。

1、胚样体与原条诱导(Day 0-1)

将hPSC从饲养层体系短暂转移至Matrigel以去除残余MEF,再在超低吸附板中形成胚样体;Y-27632、BMP4等信号支持原条样状态建立。

2、确定性内胚层诱导(Day 1-4)

在低氧条件下以高浓度Activin A为核心推进内胚层命运。继续分化前,应以EPCAM、cKIT和CXCR4检测确定性内胚层纯度,要求三者高表达细胞比例超过90%。

3、前肠前部内胚层诱导(Day 5-6)

将细胞接种于纤连蛋白包被板,先后抑制TGF-β、BMP与WNT信号(SB431542、NOGGIN、IWP2),建立前肠前部内胚层。

4、腹侧化与肺芽类器官形成(Day 6-20/25)

加入CHIR99021、FGF10、FGF7、BMP4和视黄酸;第8天将细胞团转入超低吸附板,逐步形成含折叠上皮片层与间充质的肺芽类器官(LBO)。

5、3D包埋与分支成熟(Day 20/25以后)

选择具有折叠上皮、中心清亮且不过度致密的LBO包埋于Matrigel。约1周出现出芽,2-3周可观察到明显分支;培养可延长至150天以上。


图1 | hPSC定向分化为远端肺类器官的时间轴与代表性形态

▪整体路径:hPSC依次经过胚样体、确定性内胚层、前肠前部内胚层、肺芽类器官和分支类器官五个关键阶段。

▪早期定向:Day 0-6通过Activin A以及WNT、BMP、TGF-β等通路的阶段性调控建立肺前体基础。

▪肺芽形成:Day 6-25以CHIR99021、FGF10、FGF7、BMP4和视黄酸维持腹侧化及肺谱系分化。

▪分支培养:Day 20-25后包埋于Matrigel,在相同核心因子支持下继续出芽、分支和成熟。


三、实验步骤


1

去除MEF并准备hPSC(Day -1)

选用状态良好、未见自发分化的hPSC。将约90%-95%汇合的细胞以Accutase消化,短暂接种到Matrigel包被皿中培养18-24小时,以减少残余MEF。

2

形成胚样体(Day 0)

用冷Trypsin/EDTA快速处理细胞,温和吹打后转入EB/PS培养基,并分装到6孔超低吸附板。低氧培养12-16小时形成大小较均一的胚样体,避免剧烈吹打和大团聚集。

3

诱导确定性内胚层(Day 1-4)

收集胚样体后更换确定性内胚层诱导培养基,并在Day 2和Day 3补充新鲜培养基。该阶段对Activin A、N2/B27以及细胞状态非常敏感,关键试剂应进行批次验证。

4

设置质量闸门(Day 4.1-4.3)

取少量胚样体消化为单细胞,检测EPCAM、cKIT和CXCR4。只有确定性内胚层纯度超过90%时才进入下一阶段;不同iPSC系可能需要在74.5-79.5小时范围内微调检测时间。

5

前肠前部化(Day 5-6)

将细胞以约7.5×10⁵ cells/孔接种至纤连蛋白包被的6孔板,使用Anteriorization medium-1培养24小时,再更换medium-2继续24小时。此后转为常氧培养。

6

形成LBO(Day 6-20/25)

Day 6开始腹侧化;Day 8更换新鲜培养基并轻柔吹悬细胞团,转至超低吸附板。Day 10起隔日换液,显微镜下持续观察折叠上皮结构和中心透明度。

7

Matrigel包埋与长期培养(Day 20/25以后)

每个24孔插入式培养皿放置1-4个优选LBO。操作全程保持Matrigel低温,采用底层50 μl、类器官混胶约30-50 μl、顶层50 μl的夹心包埋方式;凝固后加入培养基,每2-3天换液。


图2 | Day 20肺芽类器官的形态选择

上排为不建议优先挑选的LBO:中心过度致密或出现明显空腔;下排为较理想的LBO,可见折叠的上皮结构、轮廓相对清晰且中心较透明。形态学筛选虽然不是绝对标准,但能显著降低后续分支失败的概率。


四、常见问题及解决方案


该体系周期长、阶段多,早期偏差会在后期被放大。原文重点提示以下风险:

问题一:确定性内胚层纯度低于90%?

  • 原因分析:hPSC状态或接种密度不佳;MEF、N2/B27或Activin A批次不适用;消化和吹打过度也会影响CXCR4检测。

  • 解决方案:确认OCT4、SOX2等多能性状态;针对不同iPSC系优化接种密度和诱导时长;对关键试剂做批次测试,并减少不必要的机械剪切。

问题二:Day 8-15肺芽类器官数量少、形态异常?

  • 原因分析:前序内胚层不合格,或前肠前部化阶段接种密度偏离最佳范围。

  • 解决方案:原文以7.5×10⁵ cells/孔作为参考起点。密度过低时常见更少、更小且较快空腔化的类器官;密度过高时Day 8形态不明显,应按细胞系重新优化。

问题三:LBO在悬浮培养中变成空心球或破裂?

  • 原因分析:悬浮培养时间过长,错过了适合Matrigel包埋的窗口。

  • 解决方案:Day 20-25每日观察并及时包埋。优先选择含折叠上皮、中心清亮、无明显囊腔的LBO,避免长期悬浮至空腔化和破裂。

问题四:Matrigel中出芽或分支效率低?

  • 原因分析:上游分化质量不佳、挑选了过度致密或囊性LBO、Matrigel提前聚合,或每个insert放入类器官过多导致营养耗竭。

  • 解决方案:逐级回溯DE与LBO质量;Matrigel全程置冰、一次处理一个insert;每个insert控制1-4个LBO,并根据生长速度及时补充或更换培养基。


图3 | LBO形成的典型故障:接种密度偏差与悬浮培养过久

上图对比不同起始密度在Day 8的形态;下图显示LBO在悬浮培养超过适宜窗口后出现空腔化、破裂并形成无法有效分支的小细胞团。该图提示:密度控制和Day 20-25包埋时机是两个关键过程参数。


五、模型鉴定


肺类器官的鉴定不能只看“长出分支”。原文建议结合连续阶段的形态、免疫荧光以及转录组结果,判断肺谱系建立、远端肺成熟和非肺内胚层命运的逐步退出。

鉴定策略一:连续阶段的免疫荧光

【鉴定方法】

在Day 8、Day 20及Day 40-60等时间点进行切片或整体免疫荧光,联合检测EPCAM、NKX2.1、SOX2、FOXA1、ZEB1、Ki67和cCASP3等标志物,观察上皮、间充质、增殖和凋亡的空间分布。

【预期结果与科学解释】

  • Day 8:以前肠前部相关SOX2阳性上皮岛为主,可夹杂少量CDX2阳性细胞,并可见ZEB1阳性间充质。

  • Day 20:LBO由折叠和内陷的EPCAM阳性上皮构成,大范围上皮表达NKX2.1,周围仍可见间充质。

  • Day 40-60:类器官外周的EPCAM与NKX2.1表达更广泛;增殖细胞主要集中于外周,中心可出现非NKX2.1的FOXA1阳性内胚层样小管和较多凋亡细胞。

图4 | 不同分化阶段肺类器官的免疫荧光表征

(a) Day 8前肠前部化阶段的SOX2/CDX2及FOXA1/ZEB1分布;(b) Day 20 LBO中EPCAM、NKX2.1与ZEB1的空间关系;(c-e) Day 60类器官外周肺谱系、中心内胚层样结构、增殖与凋亡分布。这些结果共同显示:肺谱系随培养推进逐步占据类器官外周,而部分早期内胚层和间充质特征逐渐减少。

鉴定策略二:远端肺成熟度与应用边界

【成熟度判断】

建议联合检测ABCA3、SFTPB、NAPSA、SLC34A2等AT2相关标志物,并结合超微结构或表面活性物质摄取/释放功能。多数AT2相关标志物在Day 80前后逐步增强;SFTPC出现较晚,至Day 170仍并非所有细胞均表达。

【模型适用范围】

  • 疾病建模:体系含间充质,可重现特定Hermansky-Pudlak综合征基因型相关的肺纤维化表型,并曾用于发现IL-11等潜在干预靶点。

  • 病毒研究:类器官可用于呼吸道合胞病毒、副流感病毒和麻疹病毒感染研究,呈现与人肺感染相符的细胞学反应。

  • 发育研究:Day 25、40、60和80的单细胞转录组显示,远端肺标志逐渐增强,其他内胚层及间充质标志总体减少。

  • 重要局限:长期培养后的整体成熟度仍接近人胎儿第二孕期;分支缺乏体内方向性;体外难以获得成熟AT1细胞;Matrigel及酶终止步骤中血清的使用限制了转化应用。


六、结语


这套远端肺类器官方案的价值,不在于把iPSC简单培养成一个“肺样细胞球”,而在于用一条可追踪、可质控的发育路线,把早期内胚层指定、肺芽形成、上皮-间充质互作和分支成熟串联起来。

它为人类远端肺发育、遗传性间质性肺病和呼吸道病毒感染提供了较为综合的体外模型;同时,超过90%的确定性内胚层纯度、Day 20-25的LBO选择窗口以及Matrigel操作,是决定重复性的关键节点。

需要强调的是,该体系仍属于胎儿样模型,不能等同于成熟成人肺。未来若能引入更可控的合成基质、血管与免疫成分,并进一步推动AT1/AT2成熟,将更有利于机制研究和药物评价。



参考文献

Matkovic Leko, I., Schneider, R. T., Thimraj, T. A., et al. (2023). A distal lung organoid model to study interstitial lung disease, viral infection and human lung development. Nature Protocols. https://doi.org/10.1038/s41596-023-00827-6